造血干細(xì)胞自我更新相關(guān)基因的研究進(jìn)展
【關(guān)鍵詞】 造血干細(xì)胞 自我更新 基因研究
在機(jī)體的一生中,由小部分全能造血干細(xì)胞來產(chǎn)生祖細(xì)胞與成熟血細(xì)胞。為了在如此長的時(shí)期內(nèi)維持造血,造血干細(xì)胞(HSCs)具備平衡定向分化與自我更新的能力是至關(guān)重要的。自我更新指由親代細(xì)胞分裂而成的兩個(gè)子代細(xì)胞,其中一個(gè)保留造血干細(xì)胞全部生物學(xué)特征,從而維持干細(xì)胞池的大小,即干細(xì)胞數(shù)量與質(zhì)量的恒定。具備自我更新能力是HSCs的標(biāo)志性特征,但該過程發(fā)生與調(diào)控的分子機(jī)制尚不明確。在本文中,筆者將綜述最近發(fā)表的文獻(xiàn),即對(duì)影響HSCs自我更新的基因的過表達(dá)或敲除的研究,總結(jié)目前已知的HSCs自我更新的分子調(diào)控子及這些途徑相互作用的可能方式。
1 HOX
同源盒(HOX)基因是編碼調(diào)節(jié)擬胚體形成與器官發(fā)生的進(jìn)化上比較保守的一類轉(zhuǎn)錄因子,是許多組織,包括造血系統(tǒng)中干細(xì)胞發(fā)育的一關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子。HOXa5與HOXa10是長期造血干細(xì)胞(LT?HSCs)的特異性標(biāo)志,HOXa2在長/短期造血干細(xì)胞(LT?HSCs,ST?HSCs)表面均有表達(dá),HOXa9表達(dá)于造血干細(xì)胞與種系決定祖細(xì)胞[1]。Ferrell等[2]還發(fā)現(xiàn)HOXa9與HOXa10可上調(diào)Wnt信號(hào)通路中Wnt10b與其受體卷曲蛋白1,5(Frizzled1,5)基因的表達(dá)。
轉(zhuǎn)錄因子HOXb4最早被發(fā)現(xiàn)高水平表達(dá)于人富含長期培養(yǎng)起始細(xì)胞(LTC?ICs)的CD34+CD38-/loCD45RA-CD71-骨髓細(xì)胞,而在稍成熟的祖細(xì)胞中消失。用逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)HOXb4入小鼠骨髓細(xì)胞,經(jīng)5?FU處理后,在15%FBS,IL?3、IL?6與SCF中培養(yǎng)10~14 d,發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組中重建細(xì)胞數(shù)目增長了40倍,遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于未轉(zhuǎn)導(dǎo)HOXb4的對(duì)照組。由此認(rèn)為,HOXb4的持續(xù)表達(dá)在某種程度上可阻止細(xì)胞因子誘導(dǎo)的HSCs的分化。Buske等[3]發(fā)現(xiàn)HOXb4表達(dá)水平升高,導(dǎo)致具有干/祖細(xì)胞特性的人臍血細(xì)胞數(shù)量大大增加,并增強(qiáng)了造血干/祖細(xì)胞的增殖活性。擴(kuò)增后的HSCs具正常造血重建功能、種系分化特異性和LTC?ICs活性。
在小鼠模型中利用Cre/loxP技術(shù)將HOXb4基因完全敲除,造血干細(xì)胞池的重建會(huì)受到影響。Brun等[44]也發(fā)現(xiàn)HOXb4缺失小鼠可發(fā)生相對(duì)正常的造血發(fā)育,但存在中度的增殖缺陷。移植HOXb4?/?HSCs的SCID小鼠對(duì)5?FU的耐受增強(qiáng)。對(duì)照組與實(shí)驗(yàn)組中,小鼠骨髓來源的原始造血祖細(xì)胞或集落形成能力并無顯著差異,但后者對(duì)外源性生長因子的增殖應(yīng)答降低。且競(jìng)爭(zhēng)性重建造血分析表明,HOXb4-/-細(xì)胞的重建造血能力降低2倍[4]。
2 Bmi?1
Bmi?1是polycomb group(PcG)家族的一員,高表達(dá)于小鼠與人原始骨髓細(xì)胞。已有研究表明Bmi?1參與調(diào)節(jié)HSCs的增殖[5]。Bmi?1基因敲除小鼠的研究證實(shí),盡管Bmi?1缺失胚胎胎肝中的HSCs數(shù)目維持正常,這種小鼠在出生后2月內(nèi)死于廣泛漸進(jìn)性的全血細(xì)胞缺失,包括原始祖細(xì)胞的缺失[6]。Park等[7]用RT?PCR與基因表達(dá)分析,發(fā)現(xiàn)在造血發(fā)育中表達(dá)下降的Bmi?1,在純化的小鼠與人HSCs上高度表達(dá)。競(jìng)爭(zhēng)性再生試驗(yàn)表明,移植自Bmi?1-/-小鼠獲得的胎肝細(xì)胞與新生骨髓細(xì)胞10周后,受體內(nèi)幾乎沒有供體來源的成熟造血細(xì)胞[7]。這是因?yàn)楣w來源的HSCs不能進(jìn)行自我更新。Bmi?1過表達(dá)可增強(qiáng)HSCs的對(duì)稱分裂,介導(dǎo)細(xì)胞分裂時(shí)保持stemness遺傳。而且,Bmi?1表達(dá)增強(qiáng)致多潛能祖細(xì)胞的體外大量擴(kuò)增,HSCs體內(nèi)重建造血能力顯著提高。功能丟失分析表明,Bmi?1缺失與HSCs的自我更新缺陷緊密相關(guān)[5,8]。
Bmi?1通過調(diào)節(jié)干細(xì)胞命運(yùn)決定基因、存活基因、抗增殖基因預(yù)感細(xì)胞相關(guān)基因來調(diào)控HSCs的自我更新[7]。Park等[7]發(fā)現(xiàn)Bmi?1-/-HSCs呈現(xiàn)幾種表達(dá)在胚胎,神經(jīng)與造血干細(xì)胞的基因的異常表達(dá),以及幾種調(diào)節(jié)細(xì)胞循環(huán)與凋亡的基因表達(dá)的改變,包括細(xì)胞周期抑制因子p16INK4a與 p19ARF 的上調(diào)及凋亡抑制因子AI?6的下調(diào)。這些可能用以解釋Bmi?1-/-小鼠體內(nèi)HSCs的缺失:上調(diào)p16INK4a基因與衰老相關(guān);下調(diào)AI?6與上調(diào)p19ARF可導(dǎo)致細(xì)胞凋亡。
3 Shh
Sonic hedgehog(Shh)是一種共價(jià)結(jié)合膽固醇的分泌形蛋白,在動(dòng)物發(fā)育中發(fā)揮重要作用[9]。許多Hh家族成員信號(hào)分子參與體外培養(yǎng)時(shí)血細(xì)胞及內(nèi)皮細(xì)胞的產(chǎn)生,Hh蛋白可刺激定向造血干/祖細(xì)胞的增殖。Hh通路變異或用Hh信號(hào)抑制劑環(huán)杷明處理的金龍魚胚胎呈現(xiàn)成體造血干細(xì)胞形成缺陷[8]。加Hh及Shh中和抗體入含1個(gè)SCID重建細(xì)胞(SRC)的103CD34+CD38-Lin-細(xì)胞培養(yǎng)體系,然后將這些細(xì)胞以有限稀釋法注入NOD/SCID小鼠體內(nèi),7 d后,仍只含1個(gè)SRC。用可溶性Shh處理的細(xì)胞可在體內(nèi)產(chǎn)生大量的人造血細(xì)胞,表明HSCs應(yīng)答Hh信號(hào)進(jìn)行自我更新分裂[10]。
已有研究表明,Shh活性與BMP信號(hào)相關(guān)。Noggin,BMP?4的天然抑制物,可抑制Shh誘導(dǎo)的表型原始的造血細(xì)胞的增殖,其模式類似于Hh中和抗體。因此,Shh作為HSCs的一個(gè)調(diào)節(jié)因子,可能與其它轉(zhuǎn)錄因子聯(lián)合作用,依賴于下游的BMP信號(hào)[10]。
4 Wnt
Wnt蛋白是另一類重要的干細(xì)胞調(diào)節(jié)因子,通過自分泌或旁分泌發(fā)揮作用。已有研究表明,在胚胎及成體造血干/祖細(xì)胞發(fā)育中,Wnt信號(hào)發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用[9,11]。Feng等也發(fā)現(xiàn)在小鼠ES細(xì)胞向造血分化時(shí),Wnt?β?連環(huán)蛋白(Wnt信號(hào)通路的一下游激活子)被下調(diào),表明Wnt信號(hào)在小鼠ES細(xì)胞向造血分化中發(fā)揮作用。將純化的小鼠Wnt3a加入c?kit+ ThyloSca?1+Lin-小鼠骨髓細(xì)胞,隨后將之注入致死量照射的小鼠體內(nèi),6周后進(jìn)行多譜系移植分析。發(fā)現(xiàn),HSCs應(yīng)答純化Wnt3a經(jīng)歷自我更新[12]。用逆轉(zhuǎn)錄病毒將Wnt3轉(zhuǎn)導(dǎo)入hTERT基質(zhì)細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)其過表達(dá)增強(qiáng)Wnt?β?連環(huán)蛋白信號(hào),致顯著的形態(tài)學(xué)改變與生長遲緩。共培養(yǎng)2周后,試驗(yàn)組與對(duì)照組中CD34+細(xì)胞的擴(kuò)增無明顯差別,但實(shí)驗(yàn)組的鵝卵石區(qū)形成顯著減少。
Wnt 可以與Frizzled家族成員或低密度脂蛋白受體相關(guān)蛋白(LRP)結(jié)合發(fā)揮作用,激活該受體復(fù)合物可致β?連環(huán)蛋白(β?catenin)的累積;钚驭?catenin的過表達(dá)可產(chǎn)生20~49倍擴(kuò)增的c?kit+ ThyloSca?1+Lin-表型的細(xì)胞[13]。相反,axin(促進(jìn)β?catenin的降解,進(jìn)而抑制Wnt信號(hào))或Frizzled配體結(jié)合域(阻斷可溶性Wnt的結(jié)合)的異常表達(dá)導(dǎo)致體外培養(yǎng)HSCs的增殖抑制與重建造血能力的減弱[14]。為了研究Wnt信號(hào)在體內(nèi)內(nèi)環(huán)境是否有活性,Reya等[14]用帶GFP 的LEF?1/TCF(lymphoid enhancer factor?1/T cell factor,與β?catenin相互作用,促進(jìn)靶基因轉(zhuǎn)錄)感染HSCs。將其移植入小鼠體內(nèi),他們分析表達(dá)GFP的HSCs,表明內(nèi)源性干細(xì)胞可應(yīng)答Wnt信號(hào)。他們還觀察到β?catenin轉(zhuǎn)導(dǎo)的HSCs表達(dá)3~4倍或更高水平的HOXb4與Notch1,表明HSCs自我更新的調(diào)節(jié)因子間可能存在相互作用。
5 Notch
在進(jìn)化上高度保守的 Notch信號(hào)可導(dǎo)致譜系特異性基因的轉(zhuǎn)錄抑制,保持祖細(xì)胞的未分化狀態(tài)。已有研究表明,Notch通路在造血細(xì)胞發(fā)育的不同階段影響其生存、增殖及分化,包括造血干細(xì)胞的自我更新及分化[9]。
Notch信號(hào)在抑制分化中發(fā)揮重要作用。隨著HSCs分化,其表達(dá)水平被下調(diào)。抑制Notch信號(hào)導(dǎo)致HSCs體外加速分化,體內(nèi)缺失。Notch信號(hào)參與Wnt介導(dǎo)的維持HSCs未分化狀態(tài)[15]。用逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)小鼠Notch4的活性形式(Int?3)入富含干細(xì)胞的小鼠骨髓細(xì)胞,培養(yǎng)2周后,發(fā)現(xiàn)Int?3轉(zhuǎn)導(dǎo)組分化標(biāo)志物的表達(dá)更低,且較對(duì)照組其集落形成細(xì)胞CFU?GM/BFU?E數(shù)目高出3~5倍[16]。轉(zhuǎn)導(dǎo)Notch4的活性部分(Notch?IC)入人臍血CD34+CD38-細(xì)胞。較之對(duì)照組,其總的髓系集落形成細(xì)胞顯著減少(3~10倍),但其長期擴(kuò)增能力增強(qiáng)。將轉(zhuǎn)導(dǎo)的臍血細(xì)胞移植入NOD/SCID?β2-/-小鼠,在其骨髓與脾內(nèi)均可檢測(cè)到CD34+CD38-細(xì)胞[17]。
已有研究表明骨髓基質(zhì)細(xì)胞表達(dá)的Jagged1(Notch配體之一)可促進(jìn)造血干/祖細(xì)胞的擴(kuò)增[18];盡管之前Walker與Karanu等已經(jīng)分別證實(shí)Jagged1?Notch通路可維持CD34+細(xì)胞處于不成熟狀態(tài),且人Jagged1可誘導(dǎo)具多譜系重建能力的人干細(xì)胞的存活與增殖。
【參考文獻(xiàn)】
[1] Magnusson M,Brun AC,Lawrence HJ,et al. Hoxa9/hoxb3/hoxb4 compound null mice display severe hematopoietic defects[J].Exp Hematol,2007,35(9):1421?1428.
[2] Ferrell CM,Dorsam ST,Ohta H,et al. Activation of stem?cell specific genes by HOXA9 and HOXA10 homeodomain proteins in CD34+ human cord blood cells[J]. Stem Cells,2005,23(5):644?655.
[3] Buske C,F(xiàn)euring?Buske M,Abramovich C,et al.Deregulated expression of HOXB4 enhances the primitive growth activity of human hematopoietic cells[J]. Blood,2002,100: 862?868.
[4] Brun AC,Bjornsson JM,Magnusson M,et al. HOXB4 deficient mice have normal hematopoietic development but exhibit a mild proliferation defect in hematopoietic stem cells[J]. Blood,2004,103:4126-4133.
[5] Nakauchi H,Oguro H,Negishi M,et al. Polycomb gene product Bmi?1 regulates stem cell self?renewal[J]. Ernst Schering Res Found Workshop,2005,54:85?100.
[6] Hosen N,Yamane T,Muijtjens M,et al. Bmi?1?green fluorescent protein?knock?in mice reveal the dynamic regulation of bmi?1 expression in normal and leukemic hematopoietic cells[J]. Stem Cells,2007,25(7):1635?1644.
[7] Park IK,Qian D,Kiel M,et al. Bmi?1 is required for maintenance of adult self?renewing haematopoietic stem cells[J]. Nature,2003,423:302?305.
[8] Gering M,Patient R. Hedgehog signaling is required for adult blood stem cell formation in zebrafish embryos[J]. Dev Cell,2005,8(3):389?400.
[8] Blank U,Karlsson G,Karlsson S. Signaling pathways governing stem cell fate[J]. Blood,2007,110:3421?3428.
[10] Bhardwaj G,Murdoch B,Wu D,et al.Sonic hedgehog induces the proliferation of primitive human hematopoietic cells via BMP regulation[J].Nat Immunol,2001,2:172?180.
[11] Reya T. Regulation of hematopoietic stem cell self?renewal[J]. Recent Prog Horm Res,2003,58:283?295.
[12] Willert K,Brown JD,Danenberg E,et al. Wnt proteins are lipid?modified and can act as stem cell growth factors[J]. Nature,2003,423:448?452.
[13] Scheller M,Huelsken J,Rosenbauer F,et al. Hematopoietic stem cell and multilineage defects generated by constitutive beta?catenin activation[J]. Nat Immunol,2006,7(10):1037?1047.
[14] Reya T,Duncan AW,Ailles L,et al. A role for Wnt signaling in self?renewal of haematopoietic stem cells[J]. Nature,2003,423:409?414.
[15] Duncan AW,Rattis FM,Diamscio LM,et al. Integration of Notch and Wnt signaling in hematopoietic stem cell maintenance[J]. Nat Immunol,2005,6(3):314?322.
[16] Ye Q,Shieh JH,Morrone G,et al. Expression of constitutively active Notch4 (Int?3) modulates myeloid proliferatin and differentiation and promotes expansion of hematopoietic progenitors[J]. Leukemia,2004,18(4):777?787.
[17] Vercauteren SM,Sutherland HJ. Constitutively active Notch4 promotes early human hematopoietic progenitor cell maintenance while inhibiting differentiation and causes lymphoid abnormalities in vivo [J]. Blood,2004,104:2315?2322.
[18] Neves H,Weerkamp F,Gomes AC,et al. Effects of Delta1 and Jagged1 on early human hematopoiesis: correlation with expression of notch signaling?related genes in CD34+ cells[J].Stem Cells,2006,24(5):1328?1337.
【造血干細(xì)胞自我更新相關(guān)基因的研究進(jìn)展】相關(guān)文章:
臍血造血干細(xì)胞移植的相關(guān)免疫分析12-10
小腿整形術(shù)相關(guān)研究進(jìn)展11-17
基因發(fā)明專利制度相關(guān)問題分析提綱12-04
瘦素與慢性肝病相關(guān)性研究進(jìn)展11-17
關(guān)于護(hù)理人員組織承諾及相關(guān)因素研究進(jìn)展11-23
護(hù)士職業(yè)倦怠相關(guān)因素及干預(yù)措施的研究進(jìn)展03-27
IL?18基因多態(tài)性與原發(fā)性干燥綜合征的相關(guān)性03-28
新生兒全胃腸外營養(yǎng)相關(guān)性膽汁淤積的治療研究進(jìn)展12-12
- 相關(guān)推薦