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反義核酸技術及其在寄生蟲學中的應用進展
1 反義核酸的作用原理
反義核酸目前有三種來源：一是利用固相亞磷酰胺法人工合成的短小反義寡聚核苷酸(antisense oligodeoxyncleotides，AON)，這是反義核酸最普遍的應用方式，包括未修飾AON和硫代磷酸酯化(PS)、磷酸二酯化(PO)和甲基化等修飾AON二類，其中以PSAON應用最廣泛。ANO設計合成簡單，只要其順序與靶mRNA部分順序互補即可，而對基因的讀碼框無要求；二是更具有實用價值的工人表達載體，包括單個基因和多個基因的聯合反義表達載體，它是利用基因重組技術將靶基因序列反向持插入到載體的啟動子和終止子之間，通過轉錄可源源不斷產生反義RNA分子；三是天然存在的反義核酸分子，但目前分離純化尚存在困難。
1.1 反義RNA和反義DNA
反義RNA是指能和mRNA完全互補的一段小分子RNA或寡聚核苷酸片段，反義DNA是指能與基因DNA雙鏈中的有義鏈互補結合的短小DNA分子。反義RNA和反義DNA主要是通過mRNA的翻譯和基因DNA的轉錄而發揮作用：1)抑制翻譯。反義核酸一方面通過與靶mRNA結合形成空間位阻效應，阻止核糖體與mRNA結合，另一方面其與mRNA結合后激活內源性RNase或ribozyme，降解mRNA；2)抑制轉錄。反義DNA與基因DNA雙螺旋的調控區特異結合形成DNA三聚體(triplex),或與DNA編碼區結合，終止正在轉錄的mRNA鏈延長。此外，反義核酸還可抑制轉錄后mRNA的加工修飾，如5'端加帽、3'端加尾(poly a)、中間剪接和內部堿基甲基化等，并阻止成熟mRNA由細胞核向細胞漿內運輸。
1.2 核酶
Cech等發現四膜蟲核糖體RNA前體在成熟過程中，可精確地自我切除某些片段并重新連接，這種具有酶催化活性的RNA稱之為核酶。
核酶廣泛存在于生物細胞中，有錘頭狀和發夾二種結構。酶活性中心由兩個臂和中間的功能區組成。兩個臂序列高度保守，與靶RNA特異互補結合，相當于一種反義RNA，而功能區則可通過降解RNA的磷酸二酯鍵而分解消化靶RNA，而核酶本身在作用過程中并不消耗。核酶裂解分子依賴嚴格的空間結構形成，裂解部位總是位于靶RNA分子中GUX三聯體(X：C、U、A)下游方向即3'端。
核酶除天然存在外，也可人工合成。根據核酶的作用位點、靶mRNA周圍的序列和核酶本身高度保守序列，可方便地人工設計合成核酶的特異性序列。此外，利用基因工程將核酶的編碼基因克隆在SP6或T7等啟動子下游，通過轉錄合所需核酶。核酶能特異切割RNAA分子，使阻斷基因表達，特別是阻斷有害基因的表達成為可能。如果已知靶mRNA中GUX三聯體的位置，可將核酶的編碼基因插入反義表達載體的適當位置，這樣轉錄所產生的含有核酶的反義RNA具有雙重功能：一方面具有反義抑制作用，另一方面具有切割靶mRNA的催化作用。核酶在抗腫瘤、抗病毒方面具有十分誘人的前景，第一個應用核酶進行艾滋病基因治療的臨床計劃已獲準，核酶作為一種遺傳信息藥物，在腫瘤基因治療中必將日益受到重視。
2 反義核酸的作用特點
反義核酸作為基因治療藥物之一，與傳統藥物相比具有諸多優點。1)高度特異性：反義核酸藥物通過特異的堿基互補配對作用于靶RNA或DNA，猶如“生物導彈”。2)高生物活性、豐富的信息量；反義核酸是一種攜帶特定遺傳信息的信息體，堿基排列順序可千變萬化，不可窮盡。3)高效性：直接阻止疾病基因的轉錄和翻譯。4)最優化的藥物設計：反義核酸技術從本質上是應用基因的天然順序信息，實際上是最合理的藥物設計。5)低毒、安全：反義核酸尚未發現其有顯著毒性，盡管其在生物體內的存留時間有長有短，但最終都將被降解消除，這避免了如轉基因療法中外源基因整合到宿主染色體上的危險性。
3 反義核酸技術在寄生蟲學中的應用
反義核酸技術的飛速發展和成熟，使其逐漸滲透并應用到寄生蟲學領域，豐富和發展了寄生蟲病的基因治療策略。反義核酸技術在抗寄生蟲病研究的應用主要集中于原蟲類，如瘧原蟲、錐蟲和利什曼原蟲等，而且反義核酸中又以AON方面的報道最多。下面著重就AON在寄生蟲方面的研究應用作用一簡要闡述。
3.1 瘧原蟲
瘧原蟲嘌呤核苷酸合成具有特殊性，即無從頭合成途徑，依靠補救合成途徑利用體內游離的嘌呤或嘌呤核苷。瘧原蟲的二氫葉酸還原酶(dihydrofolate reductase，DHFR)和胸苷酸合酶(thymidylate synthase，TS)結合形成雙功能蛋白(DHFR-TS)，這對于維持瘧原蟲四氫葉酸水平和DNA合成極為重要，此酶也是瘧原蟲脫氧胸苷酸生物合成唯一通路中必不可少的酶�？汞懰幹械目谷~酸代謝藥如乙胺嘧啶，就是通過競爭性抑制DHFR-TS來阻斷蟲體脫氧胸苷酸生物合成。然而，隨著惡性瘧原蟲(Plasmodium falciparum)多藥抗性株的出現和廣為傳播，瘧疾的化療面臨重大挑戰，促使人們尋求新的抗瘧療法。目前，DHFR-TS是AON抗瘧作用首選靶基因。
生物大分子進入感染紅細胞中的瘧原蟲，必需穿透三層膜，即紅細胞膜、納蟲泡膜和蟲體的胞質膜。研究表明，不能穿透紅細胞膜和納蟲泡膜的大分子和葡聚糖、IgG2a抗體和蛋白A等，可經過納蟲微管(parasitophorous duct)進入蟲體，蟲體通過胞吞作用直接從細胞外攝入大分子物質。因此，對于小分子的AON而言，作用于感染紅細胞中的蟲體完全成為可能，下述眾多研究已充分證明了這一點。Rapaport等(1992)研究發現，以DHFR-TS為靶21 nt PS AON能選擇性地進入惡性瘧原蟲感染紅細胞，對體外培養的氯喹敏感株和耐藥株蟲體具有同等的抑制效果，而未感染瘧原蟲的紅細胞則完全為不攝入AON，因此這對應用反義核酸于抗瘧治療非常有利。
諸多研究表明，AON越長，對轉譯的抑制作用就越強；AON濃度越高，非特異性抑制作用越明顯，在低濃度時則呈特異性抑制。Sartorius和Franklin(1991)以DHFR-TS的mRNA為靶合成系列AON，利用兔網織紅細胞翻譯系統，探討AON對體外轉譯的抑制作用。在DHFR翻譯起始位點處合成了6條21－49nt不等長的AON，在TS編碼區全成的30nt、39nt和49nt三條AON。當AON長度為30nt或更長時，呈明顯轉譯抑制作用，抑制率可高達50％以上。其中，TS編碼區的49nt aON(OTS49)抑制效果最高，當濃度在45μmlo/L時的抑制率幾乎達90％，主要是因為OTS49與DHFR-TS靶mRNA結合抑制TS合成，這從翻譯產物的分子量(55 kDa)要比天然DHFR-TS(71 kDa)小且無TS活性可看出。
Ramasamy等和Clark等研究表明，在較高濃度下，無論DHFR-TS正義還是反義的寡聚核苷酸(M1K，M2K)，均能抑制裂殖子入侵紅細胞。究其原因，可能與高濃度的AON帶有較多的負電荷有關。Kanagaratnam等(1998)分析了瘧原蟲裂殖子表面蛋白基因的反義和正義寡聚核苷酸對瘧原蟲體外生長的影響，無論AON單獨使用抑或與脂質體混合使用，均未觀察到特異抑制效應。但在相同濃度范圍內，反義和正義寡核苷酸以及具有多聚陰離子的硫酸葡聚糖，均可抑制裂殖子入侵紅細胞。當寡聚核苷與陽離子脂質體結合后負電荷被中和時，則對裂殖子入侵紅細胞的抑制作用被取消。由此推測，寡聚核苷酸有可能借助其多聚陰離子特性干擾裂殖子與細胞上受體結合，多聚陰離子可能對瘧疾病治療有幫助。
3.1.2 AON不同修飾物對抗瘧作用影響
最近，Barker等以DHFR-TS基因為靶，比較了硫代磷酸酯化(PS)、磷酸二酯化(PO)和甲基化修飾AON，以及不同空間結構AON對體外培養蟲體生長抑制作用。結果顯示，5'和3'端至少含有3個PS基因的PO-PS雜合體AON、全部為PS修飾的AON，與部分PS修飾的AON抑制作用相同。在低濃度下(1μmol/L)，PO-PS aON和PS AON比PS-甲基化AON抑制率高25％。此外，通過延長AON序列增加干-環結構形成，提高AON的自我穩定性，結果獲得2個有干-環結構的AON(RB39、RB41)，其抑蟲生長率比序列未延長的AON約要高20％。
3.1.3 AON不同靶基因對抗瘧作用影響
AON對不同基因的抑制作用不一致，這和該基因在蟲體代謝過程中是否起舉足輕重作用密切相關。AON的抗瘧研究主要集中在DHFR-TS基因，這固然與其在瘧原蟲核苷酸代謝中的特殊地位有關(見前述)。Barker等(1996)對惡性瘧原蟲耐藥株多個靶基因的AON作用進行了比較研究，方法是將PS aON加入到瘧原蟲體外培養液中，培養48小時后，通過鏡檢和3氚-次黃嘌呤摻入試驗觀察AON對蟲體的生長抑制作用。結果表明，抑制作用與AON濃度密切相關。當AON濃度為1μmol/L時，AON呈非特異性抑制；當濃度在0.5－0.005μmol/L范圍時，以DHFR-TS、二氫喋呤合成酶、核苷酸還原酶、裂殖體多基因家族和紅細胞結合抗原-175為靶的PS aON與對照組相比，均能特異地顯著抑制蟲體生長(P＜0.0001)，而DNA聚合酶α的PS aON抑制作用更弱，磷酸丙糖異構酶的PS AON抑制作用則與對照組相同。
瘧原蟲感染紅細胞中，近75％血紅蛋白被滋養體降解而形成大量對蟲體有害的血紅素，必須在消化泡中聚集成對蟲體無毒的瘧色素。研究表明，惡性瘧原蟲組氨酸富集蛋白(HRP)家族中，HRPⅡ和HRPⅢ有明顯的促進瘧色素形成功能。因此，如能特異阻斷這些基因表達，抑制瘧色素的形成，有可能使之成為一種抗瘧新途徑。HRPⅡ與HRPⅢ從同一祖先基因分化而來，二者高度同源，翻譯起始位點附核苷酸序列則完全相同。
3.2 錐蟲
屬于動基體目的布氏錐蟲(Trypanosoma burcei)通過抗原不斷變異逃避宿主的免疫力，抗原變異是由于不同的變異體專一表面糖蛋白(variant-specific surface glycoprotein，VSG)基因呈間斷表達所致，VSG基因表達產物在錐蟲表面形成外膜，覆蓋蟲體。研究表明，VSG mRNA可分為二部分：一部分是各種變異體特有的主外顯子序列，占主要部分；另一部分是共同的5'端小外顯子序列，通常為35個核苷酸長，幾乎所有的VSG mRNA均含有此序列。實際上，除VSG外，錐蟲的鈣調蛋白、微管蛋白和磷酸丙糖異構酶mRNA中也存在共同的5'端小外顯子序列，這似乎是動基體目寄生原蟲編碼基因的共同結構特征。由于宿主mRNA無這種小外顯子序列，以小外顯子序列為靶的AON就很容易實現抑制眾多基因表達的效果，使反義核酸抗錐蟲感染成為可能。
Cornelissen等應用麥胚提取物轉譯系統、35S-甲硫氨酸摻入試驗和蛋白質SDS-PAGE方法，對與錐蟲小外顯子序列不同位點互補和不同長度的AON體外轉譯抑制作用進行了比較分析。結果所有AON均能抑制轉錄，且抑制程度與AON長度和濃度有關，AON越長，濃度越高則抑制作用越強。如3個12nt和AON抑制率達35％－60％，而22nt和34nt aON在濃度為15－30μmol/L時對錐蟲總RNA轉錄抑制率高達95％－100％。在同一轉譯系統中，BMV病毒(Brome mosaic Virus)和無小外顯子序列的錐蟲磷酸甘油酸激酶mRNA卻完全不受34 nt AON的抑制，與錐蟲小外顯子序列不互補的18 nt AON對錐蟲轉譯則無任何影響。上述發現充分證明，以錐蟲5'端小外顯子mRNA序列為靶的AON對轉譯具有特異抑制作用。
Walder等用兔網織紅細胞轉譯系統，也獲得上述相類似的結果。Verspieren等研究表明，小外顯子AON的二級結構和堿基的修飾會直接影響其與靶mRNA的親和性，從而間接影響AON的轉譯抑制效果。如上述與小外顯子第2位至第13位堿基互補的12nt aON，雖然抑制布氏錐蟲轉譯，但不能抑制活動錐蟲(Trypanosoma vivax)mRNA轉譯，這顯然與二種蟲體的小外顯子第3位和第7位堿基不同有關。
Verspieren等首次嘗試用吖啶衍生物(acridine derivative)修飾布氏錐蟲5'端小外顯子序列的AON，觀察其對培養蟲體的殺傷作用。結果表明，連接有吖啶分子的9nt aON與相同長度但未連接吖啶分子的AON相比，能更為有效地抑制錐蟲蛋白質的體外合成，且能有效地殺死體外培養蟲體。無論如何，未連接吖啶的9nt aON和雖連接吖啶但不與錐蟲5'端小外顯子序列互補的9nt AON，均不能殺死培養蟲體。AON經吖啶修飾后能提高其殺錐蟲作用，推測可能與下述因素有關：一是通過吖啶修飾增加AON與靶mRNA間的親和力，二是提高對3'端核酸外切酶的抗性，延長其作用半衰期，三是促進AON對活細胞膜的穿透。因此，對AON進行吖啶修飾提高其作用效率值得研究借鑒。
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